服务介绍：

机体中存在多种抗氧化物，包括抗氧化大分子、抗氧化小分子和酶等，可以清除体内产生的各种活性氧，以阻止活性氧诱导的氧化应激(oxidative stress)的产生。一个体系内的各种抗氧化大分子、抗氧化小分子和酶的总的水平即体现了该体系内的总抗氧化能力。因此测定血浆、血清、尿液、唾液等各种体液，细胞或组织等裂解液中的总抗氧化能力具有非常重要的生物学意义。植物或中草药抽提液、或各种抗氧化物溶液的总抗氧化能力的检测可以用于检测各种溶液的抗氧化能力的强弱，可以用于筛选强抗氧化能力的药物。

实验图：

实验结果展示：

实验流程（具体步骤以说明书为准）：

1. 样品准备

血清、血浆、透明液体状样本、动植物组织，细胞等

2. 检测前准备

处理样本，配制试剂

3. 检测步骤

加样-加试剂-显色反应后酶标仪读数

4. 实验结果

样本OD值代入公式计算出结果，以EXCEL形式发出

送样运输要求：

1、动植物组织样本（干冰运输）

①动物处死后5min内取样，全程冰上操作，先取易降解的组织，如胰腺、肠、胃等，再取其它组织，组织块至少取50mg以上（黄豆大小）。组织取好后用预冷的PBS轻轻漂洗掉样本表面的血污，例如心、肝、脾、肾等血污较多的组织，可用预冷PBS清洗多次，直至血污清洗干净，用滤纸吸干组织表面液体，立即放入EP管或冻存管中-80℃保存。

②肠，胃，血管，食管，子宫等标本，取材后立即把组织切开用预冷PBS清洗多次，去除内容物，用滤纸吸干组织表面液体，立即放入EP管或冻存管中-80℃保存。

③刚孵化的斑马鱼离心后至少提供黄豆大小的数量。

④视网膜需单独剥离，小鼠至少需要4个视网膜合并，大鼠至少需要2个视网膜合并。

⑤皮肤样本需去净毛发。

2、血清样本（干冰运输）

全血标本加到促凝管（黄色管盖，QX0028）或者无菌无酶的EP管（EP-150X-J）中室温静置2小时后于2-8℃ 3000rpm/min离心15min，取上清放于-20℃或-80℃保存，避免反复冻融。

3、血浆样本（干冰运输）

全血样本置于肝素抗凝管内（绿色管盖，QX0012），采血量为抗凝管标注体积的80%-100%，血量勿超过抗凝管标注体积否则抗凝效果不佳，血量不少于80%标注体积，否则样本会被抗凝剂稀释。轻轻颠倒混匀，30分钟内于2-8℃ 3000rpm/min离心15min，取上清放于-20℃或-80℃保存，避免反复冻融。

4、细胞样本（细胞量至少10⁷，细胞沉淀黄豆大小,干冰运输）

贴壁细胞：①培养好的细胞弃培养基，加入PBS，用细胞刮沿一个方向轻轻刮下细胞，切记不要反复刮，避免细胞刮破。②细胞液收集至离心管内，4℃低速离心（不超过3000rpm）5min，去上清，收集细胞沉淀，细胞沉淀要有黄豆大小。

悬浮细胞：①将细胞及培养基一起吸入离心管中，4℃低速离心（不超过3000rpm）5 min，去上清，收集细胞沉淀。②加入1mL PBS溶液重悬细胞，将细胞转移到1.5mL离心管中，4℃低速离心（不超过3000rpm）5min，去上清，收集细胞沉淀，细胞沉淀要有黄豆大小。

细胞上清：取细胞培养基于2-8℃，3000rpm/min离心15min取上清，于-20℃或-80℃保存，避免反复冻融。

备注：不要寄送培养板或培养瓶，运输过程中细胞容易脱落且造成细胞活力下降，培养板有漏液风险，造成样本污染。

仅供科研用途，不可用于临床诊断！