服务介绍：

机体通过酶系统与非酶系统产生氧自由基，后者能攻击生物膜中的多不饱和脂肪酸，引发脂质过氧化作用，并因此形成脂质过氧化物。如：醛基(丙二醛MDA)、酮基、羟基、羰基、氢过氧基或内过氧基，以及新的氧自由基等。脂质过氧化作用不仅把活性氧转化成活性化学剂，即非自由基性的脂类分解产物，而且通过链式或链式支链反应，放大活性氧的作用。因此，初始的一个活性氧能导致很多脂类分解产物的形成，这些分解产物中，一些是无害的，另一些则能引起细胞代谢及功能障碍，甚至死亡。氧自由基不但通过生物膜中多不饱和脂肪酸的过氧化引起细胞损伤，而且还能通过脂氢过氧化物的分解产物引起细胞损伤。因而测试MDA的量常常可反映机体内脂质过氧化的程度，间接地反映出细胞损伤的程度。MDA的测定常常与SOD的测定相互配合，SOD活力的高低间接反应了机体清除氧自由基的能力，而MDA的高低又间接反应了机体细胞受自由基攻击的严重程度，通过SOD与MDA的结果分析有助于医学、生物学、药理及工农业生产的发展。

实验图：

实验结果展示：

实验流程（具体步骤以说明书为准）：

1. 样品准备

血清、血浆、透明液体状样本、动植物组织，细胞等

2. 检测前准备

处理样本，配制试剂

3. 检测步骤

加样-加试剂-显色反应后酶标仪读数

4. 实验结果

样本OD值代入公式计算出结果，以EXCEL形式发出 

送样运输要求：

1、动植物组织样本（干冰运输）

①动物处死后5min内取样，全程冰上操作，先取易降解的组织，如胰腺、肠、胃等，再取其它组织，组织块至少取50mg以上（黄豆大小）。组织取好后用预冷的PBS轻轻漂洗掉样本表面的血污，例如心、肝、脾、肾等血污较多的组织，可用预冷PBS清洗多次，直至血污清洗干净，用滤纸吸干组织表面液体，立即放入EP管或冻存管中-80℃保存。

②肠，胃，血管，食管，子宫等标本，取材后立即把组织切开用预冷PBS清洗多次，去除内容物，用滤纸吸干组织表面液体，立即放入EP管或冻存管中-80℃保存。

③刚孵化的斑马鱼离心后至少提供黄豆大小的数量。

④视网膜需单独剥离，小鼠至少需要4个视网膜合并，大鼠至少需要2个视网膜合并。

⑤皮肤样本需去净毛发。

2、血清样本（干冰运输）

全血标本加到促凝管（黄色管盖）或者无菌无酶的EP管中室温静置2小时后于2-8℃ 3000rpm/min离心15min，取上清放于-20℃或-80℃保存，避免反复冻融。

3、血浆样本（干冰运输）

全血样本置于肝素抗凝管内，采血量为抗凝管标注体积的80%-100%，血量勿超过抗凝管标注体积否则抗凝效果不佳，血量不少于80%标注体积，否则样本会被抗凝剂稀释。轻轻颠倒混匀，30分钟内于2-8℃ 3000rpm/min离心15min，取上清放于-20℃或-80℃保存，避免反复冻融。

4、细胞样本（细胞量至少10⁷，细胞沉淀黄豆大小,干冰运输）

贴壁细胞：①培养好的细胞弃培养基，加入PBS，用细胞刮沿一个方向轻轻刮下细胞，切记不要反复刮，避免细胞刮破。②细胞液收集至离心管内，4℃低速离心（不超过3000rpm）5min，去上清，收集细胞沉淀，细胞沉淀要有黄豆大小。

悬浮细胞：①将细胞及培养基一起吸入离心管中，4℃低速离心（不超过3000rpm）5 min，去上清，收集细胞沉淀。②加入1mL PBS溶液重悬细胞，将细胞转移到1.5mL离心管中，4℃低速离心（不超过3000rpm）5min，去上清，收集细胞沉淀，细胞沉淀要有黄豆大小。

细胞上清：取细胞培养基于2-8℃，3000rpm/min离心15min取上清，于-20℃或-80℃保存，避免反复冻融。

备注：不要寄送培养板或培养瓶，运输过程中细胞容易脱落且造成细胞活力下降，培养板有漏液风险，造成样本污染。